Técnicas de biopsia por sospecha | Boards' Fodder · Lectura clínica

Qué biopsia elegir (afeitado, punch, incisional, en cuña o excisional), dónde tomarla y en qué medio enviarla ante una ampollosa, una vasculitis, una paniculitis, una alopecia, un linfoma, un melanoma o una infección, y qué errores convierten una muestra en inútil.

Biopsia cutáneaInmunofluorescencia directaMedios de transportePelo y uñaOncología cutánea

Obra de referencia: columna «Boards’ Fodder» de Dermatology World: Directions in Residency (American Academy of Dermatology). Síntesis editorial DermRX actualizada a septiembre de 2026 · Revisión clínica individual pendiente · 12 min de lectura.

Decisiones esenciales

En 20 segundos

Formol tamponado al 10 % solo sirve para hematoxilina-eosina e inmunohistoquímica: la IFD, el cultivo, la citometría y la microscopía electrónica necesitan muestra y medio propios.
IFD en ampollosas autoinmunes: piel perilesional a menos de 1 cm de la ampolla, mejor en tronco o brazos, en suero fisiológico si llega al laboratorio en 24-48 h o en medio de Michel.
Vasculitis: la lesión más reciente (menos de 48 h; menos de 24 h para IFD) y con profundidad suficiente; en nódulos, livedo y paniculitis, incisional profunda que incluya hipodermis.
Lesión sospechosa de melanoma: extirpación completa con 1-3 mm de margen; las biopsias parciales se reservan para lesiones grandes o localizaciones difíciles y pueden infraestadificar.
Alopecia: punch de 4 mm paralelo a los tallos hasta la grasa, elegido con tricoscopia; en cicatricial, del borde activo, y con cortes horizontales y verticales.

Lo que merece la pena retener

Claves de la lectura

Cada pregunta al laboratorio exige su muestra y su medio

El formol fija proteínas y destruye la antigenicidad que necesita la inmunofluorescencia directa; también mata los microorganismos y arruina la citometría. Antes de coger el punch conviene decidir qué se va a pedir: H&E en formol, IFD en suero fisiológico o Michel, cultivo en fresco en envase estéril, citometría en RPMI y microscopía electrónica en glutaraldehído. Muchos estudios moleculares (clonalidad, BRAF, fusiones) sí se hacen sobre tejido fijado e incluido en parafina.

La biopsia tiene que llegar hasta donde está la enfermedad

Los procesos epidérmicos y de dermis papilar se resuelven con un afeitado; los que afectan a dermis reticular, anejos o vasos de mediano calibre requieren punch profundo o incisional, y la grasa solo se valora con una cuña generosa. Un afeitado superficial de un tumor infiltrante (basocelular esclerosante, carcinoma anexial microquístico, dermatofibrosarcoma) puede dar un informe tranquilizador y falso.

Elegir la lesión: ni demasiado precoz ni demasiado vieja

La vasculitis se lee en la lesión más reciente, antes de que el infiltrado neutrofílico sea sustituido por linfocitos y los inmunorreactantes se degraden. Las ampollas deben ser recientes e intactas, la alopecia areata y la sífilis se biopsian en fase activa, y el lupus en una lesión establecida pero todavía inflamada. En la epidermólisis ampollosa se induce una ampolla fresca frotando piel sana.

IFD: el sitio decide la sensibilidad

En pénfigo, penfigoide, dermatitis herpetiforme y penfigoide de mucosas se toma piel o mucosa perilesional aparentemente sana, porque la ampolla y la erosión degradan los depósitos. En vasculitis, lupus y porfirias se toma lesión. En el penfigoide conviene evitar la parte distal de las piernas, donde el rendimiento es menor y la estasis confunde; son preferibles tronco y brazos.

Melanoma: extirpar entero siempre que sea razonable

La biopsia excisional con 1-3 mm de margen permite medir el Breslow real y estadificar; orientarla según el eje de la futura ampliación evita comprometer el ganglio centinela. Si la lesión es muy grande o facial (lentigo maligno), una saucerización amplia o varias biopsias dirigidas por dermatoscopia son alternativas aceptables, sabiendo que infraestiman el espesor.

Linfoma: varias muestras, sin corticoide previo y con material para clonalidad

La micosis fungoide precoz es sutil: rinde más tomar dos o tres biopsias de las placas más infiltradas, tras suspender unas semanas los corticoides tópicos si es posible, y pedir estudio de reordenamiento del receptor T. En los linfomas B la biopsia debe incluir dermis profunda e hipodermis; la citometría exige tejido fresco en RPMI.

Uña: la matriz manda en la melanoniquia

La banda pigmentada nace en la matriz, así que biopsiar el lecho o la lámina no basta. Para melanoniquias sospechosas se prefiere hoy la escisión tangencial de matriz, que extirpa la lesión con poca distrofia; la escisión longitudinal lateral se reserva para cuando se sospecha melanoma invasivo. Un punch de matriz de 3 mm o menos no necesita sutura.

Repaso organizado

Sospecha por sospecha: qué biopsia y en qué frasco

Primero la caja de herramientas (medios y técnicas); después cuatro bloques clínicos: ampollosas y reacciones epidérmicas, vasos, grasa, conectivopatías e infecciones, pelo y uña, y tumores.

Medios de transporte y técnicas

Formol tamponado al 10 %

Estándar para H&E, inmunohistoquímica y buena parte de la biología molecular

Sirve para: Hematoxilina-eosina, tinciones especiales, inmunohistoquímica, PCR y FISH sobre parafina (clonalidad, BRAF, COL1A1::PDGFB).
No sirve para: IFD, cultivo, citometría de flujo ni microscopía electrónica.
Volumen: Abundante respecto a la pieza para que fije bien; en invierno, evitar que el frasco se congele durante el transporte.
Error típico: Meter en el mismo frasco la muestra para IFD: el estudio queda invalidado y hay que repetir la biopsia.

Medios para inmunofluorescencia directa

Suero fisiológico, Michel (o Zeus) o congelación en nitrógeno líquido

Suero fisiológico: Válido y hasta preferible si la muestra llega en 24-48 h: el lavado reduce la fluorescencia de fondo.
Michel o Zeus: Solución de transporte que preserva inmunorreactantes varios días; útil si el laboratorio está lejos.
Nitrógeno líquido: Congelación inmediata; solo si el laboratorio procesa en el momento.
Tamaño: Punch de 3-4 mm suele bastar; en mucosa, fragmento perilesional pequeño bien identificado.

Muestras para cultivo y estudios en fresco

Envase estéril, suero no bacteriostático, sin formol y sin demora

Cultivo: Tejido fresco en envase estéril con unas gotas de suero fisiológico no bacteriostático; indicar microorganismo sospechado (bacterias, micobacterias, hongos, leishmania).
Citometría: Tejido fresco en medio RPMI o gasa empapada en suero, enviado de inmediato.
Microscopía electrónica: Fragmentos pequeños en glutaraldehído al 2,5 %; hoy su uso es de centros de referencia.
Dividir la pieza: Un punch de 6 mm es el mínimo razonable para partirlo en cultivo e histología; si no, hacer dos biopsias.

Afeitado y saucerización

Rápido y estético para procesos superficiales; peligroso si el tumor es profundo

Afeitado superficial: Epidermis y dermis papilar: queratosis, carcinomas superficiales, micosis fungoide en placa.
Saucerización: Afeitado profundo en cuenco hasta dermis reticular; permite extirpar lesiones pigmentadas pequeñas completas.
Limitación: No valora dermis profunda, grasa ni invasión perineural; transecciona tumores gruesos.
Zonas: En piel facial fina y superficies convexas conviene no profundizar más de lo necesario.

Punch

Cilindro de todo el espesor dérmico; el comodín de la dermatología inflamatoria

Calibre: 3-4 mm para inflamatorias e IFD; 4 mm en alopecia; 6 mm si hay que dividir la pieza.
Técnica: Tensar la piel perpendicular a las líneas de tensión para obtener una herida elíptica; girar hasta la grasa.
Manipulación: Sacar la pieza sin pinzarla con fuerza para no crear artefacto por aplastamiento.
Limitación: Poca grasa: insuficiente para paniculitis y vasculitis de mediano calibre.

Incisional, en cuña y excisional

Cuando hace falta profundidad, arquitectura completa o extirpar la lesión

Incisional: Huso que incluye parte de la lesión y, a veces, piel sana; útil en tumores grandes y dermatofibrosarcoma.
En cuña profunda: Huso con abundante hipodermis; estándar en paniculitis y en vasculitis nodular.
Excisional: Extirpa toda la lesión con margen estrecho; de elección en la sospecha de melanoma.
Orientación: Marcar con un punto o una muesca (por ejemplo, a las 12) cuando el patólogo deba informar márgenes.

Ampollosas y reacciones epidérmicas graves

Ampollosas autoinmunes (pénfigo y penfigoide)

Dos muestras: borde de ampolla reciente para H&E y piel perilesional para IFD

H&E: Ampolla pequeña intacta saucerizada entera o borde de una ampolla reciente con piel vecina, para ver el nivel de la separación.
IFD: Piel perilesional aparentemente sana a menos de 1 cm, en tronco o brazos mejor que en piernas.
Transporte: Suero fisiológico si llega en 24-48 h; Michel si tarda más.
Completar: Suero para ELISA (desmogleínas, BP180, BP230) e inmunofluorescencia indirecta.

Dermatitis herpetiforme

IFD de piel perilesional normal, nunca de la vesícula excoriada

Sitio: Piel de aspecto normal junto a las lesiones, en zonas típicas (codos, nalgas).
Hallazgo buscado: IgA granular en las papilas dérmicas.
Dieta: Una dieta sin gluten prolongada puede negativizar los depósitos: preguntar antes de biopsiar.
Serología: IgA antitransglutaminasa con IgA total y, si procede, antiendomisio.

Penfigoide de mucosas

Biopsia de mucosa perilesional; la lesión ulcerada no sirve

Sitio: Mucosa oral perilesional no erosionada; si no hay afectación oral, piel perilesional.
Dificultad: La IFD puede ser negativa; repetir la biopsia aumenta el rendimiento.
Serología: BP180, BP230, laminina 332 y colágeno VII; la laminina 332 obliga a buscar neoplasia.
Coordinación: Valoración oftalmológica aunque el ojo parezca sano.

Epidermólisis ampollosa hereditaria

Ampolla inducida fresca, mapeo antigénico y, sobre todo, estudio genético

Muestra: Frotar piel clínicamente sana hasta inducir una ampolla y biopsiar su borde; evitar ampollas de más de 12 h, ya reepitelizadas.
Estudios: Mapeo por inmunofluorescencia en congelado o Michel; microscopía electrónica en glutaraldehído en centros de referencia.
Genética: La secuenciación de nueva generación es hoy la prueba que define el subtipo.
Derivar: Centro de referencia de enfermedades ampollosas hereditarias.

SSJ/NET frente a epidermólisis estafilocócica

La diferencia está en el nivel del despegamiento, y se puede saber en horas

SSJ/NET: Necrosis epidérmica de todo el espesor con separación subepidérmica.
Epidermólisis estafilocócica: Separación alta, subcórnea o en la granulosa, con epidermis viable debajo.
Técnica rápida: Corte por congelación de la lámina de epidermis desprendida enrollada o de un punch del borde.
Muestra: Afeitado o punch de lesión aguda que incluya todo el grosor epidérmico.

Vasos, grasa, conectivopatías e infecciones

Vasculitis de pequeño vaso (púrpura palpable)

Lesión más reciente, punch profundo y otra muestra para IFD

H&E: Punch de 4 mm hasta hipodermis en la lesión más nueva, idealmente de menos de 48 h.
IFD: Otra lesión reciente, de menos de 24 h si es posible, en suero o Michel; buscar IgA.
Por qué: Después, los neutrófilos dejan paso a linfocitos y los inmunorreactantes (sobre todo IgA) desaparecen.
La muestra debe mostrar: Vénulas poscapilares superficiales y plexo profundo.

Vasculitis de mediano vaso, livedo y nódulos

La arteria afectada está en la unión dermohipodérmica: hace falta cuña

Técnica: Incisional en huso profundo o doble punch en profundidad, centrada en el nódulo o en el centro claro de la livedo.
Sospechas: Poliarteritis nudosa cutánea, vasculitis asociadas a ANCA, vasculopatía livedoide.
Riesgo: Un punch superficial suele ser falsamente negativo.
Completar: ANCA, crioglobulinas, complemento y serologías según contexto.

Paniculitis

Incisional profunda en el borde de un nódulo activo, con grasa abundante

Técnica: Huso profundo con buena cantidad de hipodermis, en el borde del foco necrótico o del nódulo activo, no en la úlcera.
Patrón: Solo una muestra amplia permite distinguir septal de lobulillar y ver si hay vasculitis.
Cultivo: Si se sospecha infección, dividir la pieza (mínimo 6 mm) o hacer una segunda biopsia en fresco.
No siempre: Un eritema nudoso típico con causa evidente puede no necesitar biopsia.

Lupus cutáneo

Lesión establecida y activa; la IFD aporta poco si H&E y serología encajan

H&E: Punch de 4 mm o más de una lesión activa de varias semanas o meses de evolución, sin tratar si es posible.
IFD: Banda granular de IgG, IgM y C3 en la unión en lesiones establecidas; en lesiones recientes suele ser negativa.
Alopecia: En lupus discoide del cuero cabelludo, la IFD de la zona activa ayuda a separarlo del liquen plano pilar.
Correlación: Anticuerpos (ANA, anti-Ro) y clínica pesan más que la banda lúpica.

Dermatomiositis

Histología de interfase indistinguible del lupus; la clave está en la serología

H&E: Punch de 4 mm de una lesión activa: dermatitis de interfase con mucina dérmica.
IFD: Rendimiento escaso; no sustituye a los anticuerpos específicos de miositis.
Completar: Anticuerpos específicos (TIF1-γ, NXP2, MDA5, Mi-2, antisintetasa) y cribado de neoplasia según riesgo.
Pista: La mucina y la clínica dirigen; histológicamente no se separa del lupus con fiabilidad.

Sospecha de infección profunda

Micobacterias, hongos, leishmania: histología y cultivo de la misma lesión

Técnica: Punch de 6 mm dividido o dos punch; incluir dermis profunda e hipodermis en nódulos y úlceras (borde activo).
Cultivo: En fresco, envase estéril, sin formol; avisar al laboratorio del germen sospechado por los medios y tiempos de incubación.
Parafina: Tinciones especiales (Ziehl, PAS, Grocott) y PCR sobre tejido fijado cuando el cultivo no se hizo o fue negativo.
Inmunodeprimido: Biopsiar pronto y siempre con cultivo: la histología puede ser pobre.

Pelo y uña

Alopecia cicatricial

Borde activo, guiado por tricoscopia, punch de 4 mm y cortes combinados

Sitio: Folículos del margen activo con eritema o descamación perifolicular, tapones o penachos; nunca el centro cicatricial ya extinguido.
Técnica: Punch de 4 mm paralelo a la salida de los pelos, hasta la grasa, donde están los bulbos.
Cortes: Horizontales y verticales: dos biopsias o una sola procesada con HoVert o técnica de Tyler.
IFD: Solo si se sospecha lupus discoide; en la mayoría de alopecias no cambia el diagnóstico.

Alopecia androgenética y efluvio telógeno

Cortes horizontales para contar folículos y la proporción terminal/vello

Sitio: Zona establecida de alopecia (en efluvio, vértex o área representativa).
Técnica: Punch de 4 mm hasta la grasa; una o dos muestras según el laboratorio.
Lectura: Recuento folicular, cociente terminal/vello y proporción de telógenos.
Indicación: Solo si clínica y tricoscopia no bastan.

Alopecia areata y alopecia sifilítica

Lesión reciente y activa; histología parecida, serología decisiva

Sitio: Borde de una placa reciente, con pelos en signo de exclamación o puntos negros en tricoscopia.
Histología: Infiltrado linfocitario peribulbar en ambas; en sífilis puede haber células plasmáticas e inmunohistoquímica de treponema positiva.
Cortes: Horizontales para ver el desplazamiento a catágeno/telógeno y la miniaturización.
Completar: Serología de sífilis ante alopecia apolillada o con otros signos de secundarismo.

Matriz ungueal (melanoniquia longitudinal)

Escisión tangencial de matriz si es sospechosa; longitudinal si se teme melanoma invasivo

Preparación: Avulsión parcial o total de la lámina para exponer el origen de la banda.
Tangencial: Afeitado de la matriz que contiene la lesión; buena muestra y poca distrofia, con recidiva del pigmento frecuente.
Otras: Punch de 3 mm o menos (sin sutura) en bandas estrechas; escisión elíptica horizontal de matriz distal.
Longitudinal: Escisión lateral que incluye matriz, lecho y pliegues cuando la probabilidad de melanoma invasivo es alta.

Lecho ungueal

Punch o elipse longitudinal; la avulsión ayuda pero no es obligatoria

Técnica: Punch a través de la lámina reblandecida o tras avulsión, o elipse longitudinal suturada.
Indicaciones: Tumores del lecho, onicopapiloma, carcinoma epidermoide ungueal, psoriasis o liquen dudosos.
Recorte ungueal: Antes de biopsiar, el estudio del recorte de lámina (PAS, pigmento) puede resolver micosis y algunas melanoniquias.
Cierre: Sutura reabsorbible cuando el defecto lo requiera.

Tumores

Carcinoma basocelular y epidermoide

Profundidad suficiente para ver patrón infiltrante e invasión perineural

Técnica: Afeitado profundo o punch que alcance dermis reticular.
Por qué: El subtipo de alto riesgo (infiltrante, esclerosante) y la invasión perineural pueden estar solo en la parte profunda.
Zonas especiales: En superficies convexas y piel facial fina, afeitados más superficiales para evitar defectos.
Informe: Pedir subtipo, profundidad y neurotropismo: condicionan la indicación de Mohs.

Lesión melanocítica sospechosa

Biopsia excisional con 1-3 mm de margen como primera opción

Técnica: Huso o saucerización profunda que extirpe toda la lesión con 1-3 mm de piel sana.
Orientación: Eje compatible con la futura ampliación y con el drenaje linfático; marcar las 12 si se desea orientar.
Biopsia parcial: Aceptable en lesiones muy grandes o faciales y acrales; dirigirla a la zona dermatoscópicamente más atípica.
Evitar: Márgenes amplios de entrada o colgajos antes del diagnóstico: alteran el mapa linfático.

Dermatofibrosarcoma protuberans y tumores profundos

Incisional profunda; el afeitado suele quedarse corto

Técnica: Biopsia incisional que incluya dermis profunda e hipodermis.
Confirmación: CD34 difuso y detección de la fusión COL1A1::PDGFB por FISH o RT-PCR en parafina.
Informe: Especificar si hay transformación fibrosarcomatosa.
Otros: Carcinoma anexial microquístico, basocelular esclerosante: misma regla de profundidad.

Micosis fungoide y linfomas T

Varias biopsias de las placas más infiltradas y estudio de clonalidad

Técnica: Afeitado amplio por debajo de la unión dermoepidérmica o punch; ambas válidas si incluyen epidermis y dermis superficial.
Número: Dos o tres muestras de localizaciones distintas; el mismo clon en dos sitios apoya el diagnóstico.
Preparación: Suspender, si es posible, los corticoides tópicos unas semanas antes.
Si es negativa: Repetir la biopsia si la clínica sigue siendo sugestiva.

Linfoma B cutáneo primario

Punch profundo o incisional: el infiltrado suele estar en dermis profunda

Técnica: Punch profundo, saucerización profunda o incisional hasta hipodermis; el afeitado superficial no sirve.
En fresco: Fragmento en RPMI para citometría si el hematopatólogo lo solicita.
Parafina: Inmunohistoquímica, cadenas ligeras y clonalidad de inmunoglobulinas.
Estadificación: Excluir afectación sistémica antes de calificarlo de primario cutáneo.

Segunda mirada

Decisiones que se confunden

Cuatro dilemas frecuentes al coger el bisturí o el punch.

Lesional o perilesional: dónde tomar la IFD

Perilesional: Pénfigo, penfigoide, penfigoide de mucosas, dermatitis herpetiforme, dermatosis IgA lineal, epidermólisis ampollosa adquirida.
Lesional reciente: Vasculitis (menos de 24 h si es posible) y urticaria vasculitis.
Lesional establecida: Lupus cutáneo y liquen plano.
Error: Biopsiar la ampolla o la erosión para IFD: los depósitos se degradan y el resultado es falsamente negativo.

Excisional frente a parcial ante un posible melanoma

Excisional: Espesor real, márgenes, estadificación fiable; de elección si la lesión lo permite.
Saucerización profunda: Extirpa lesiones planas pequeñas completas; riesgo de transeccionar la base si es gruesa.
Punch o incisional: Solo en lesiones grandes o zonas especiales; puede infraestimar Breslow y perder la zona más atípica.
Regla práctica: Si la biopsia parcial es benigna y la clínica no encaja, extirpar entera.

Cortes horizontales frente a verticales en alopecia

Horizontales: Cuentan folículos, miden miniaturización y fases del ciclo; imprescindibles en efluvio, alopecia androgenética y areata.
Verticales: Muestran epidermis, unión dermoepidérmica, dermis e infiltrado de interfase; clave en lupus y liquen plano pilar.
Solución: Dos punch o uno solo procesado con HoVert (disco superior vertical, resto horizontal) o técnica de Tyler.
Tricoscopia: Elige el folículo que se va a biopsiar y mejora el rendimiento en alopecia cicatricial.

Afeitado frente a punch en la sospecha de linfoma

Micosis fungoide: Afeitado amplio o punch: lo importante es incluir epidermis y dermis superficial en varias placas.
Linfoma B: Punch profundo o incisional: el infiltrado es dérmico profundo y a veces hipodérmico.
Paniculítico: Incisional en cuña con grasa abundante.
Molecular: La clonalidad se estudia sobre parafina; la citometría necesita tejido fresco.

Escenarios clínicos

Qué haría en consulta

Elaboración editorial propia de DermRX: escenarios orientativos que no sustituyen al juicio clínico ni a la ficha técnica.

Si un anciano con prurito intenso tiene ampollas tensas en tronco y piernas

Haría dos biopsias: el borde de una ampolla reciente con piel vecina en formol para H&E y un punch de piel perilesional en tronco o brazo en suero fisiológico, avisando para que llegue en menos de 48 h. Pediría a la vez ELISA de BP180 y BP230 e inmunofluorescencia indirecta en piel separada con sal.

Si un paciente tiene púrpura palpable en las piernas desde hace tres días con brotes nuevos

Elegiría las lesiones aparecidas en las últimas horas: un punch de 4 mm hasta la grasa para H&E y otro para IFD en suero fisiológico, pidiendo IgA. Solicitaría sedimento de orina y función renal, porque la biopsia confirma la vasculitis pero no mide la afectación sistémica.

Si hay nódulos dolorosos en las piernas que no parecen un eritema nudoso típico

Haría una biopsia incisional profunda en huso, en el borde de un nódulo activo y no en la úlcera, con abundante grasa. Si cabe infección (inmunodepresión, viajes, supuración), dividiría la pieza o haría otra biopsia para cultivo en fresco.

Si una mujer consulta por alopecia cicatricial en progresión en el vértex

Haría tricoscopia para escoger folículos del borde activo con descamación o eritema perifolicular y tomaría un punch de 4 mm paralelo a los pelos hasta la grasa, pidiendo cortes horizontales y verticales. Añadiría IFD solo si la clínica sugiere lupus discoide.

Si encuentro en la espalda una lesión pigmentada de 8 mm con criterios dermatoscópicos de melanoma

Haría una biopsia excisional con 1-3 mm de margen, en el eje que facilite la ampliación posterior, sin colgajos. Anotaría la sospecha en la petición para que el patólogo realice cortes seriados si hace falta.

Si sospecho micosis fungoide en placas eccematiformes persistentes que responden a medias a corticoides

Pediría suspender el corticoide tópico unas semanas y tomaría dos o tres biopsias de las placas más infiltradas en localizaciones distintas, solicitando estudio de clonalidad T. Si el resultado no es concluyente y la clínica persiste, repetiría la biopsia más adelante.

Detalles que cambian la conducta

Perlas de examen y de consulta

◆La IFD nunca va en formol

Es el error preanalítico más frecuente y obliga a repetir la biopsia; conviene tener suero fisiológico y medio de Michel en la consulta.

◆Punch de 6 mm: el mínimo para partirlo

Si se quiere cultivo e histología de la misma lesión con una sola biopsia, por debajo de 6 mm cada mitad resulta insuficiente.

◆Epidermólisis ampollosa: ampolla inducida y fresca

Una ampolla de más de 12 h empieza a reepitelizarse y el nivel de separación se vuelve difícil de interpretar.

◆SSJ/NET frente a SSSS en horas

El corte por congelación de la epidermis desprendida enrollada muestra si la necrosis es de todo el espesor o la separación es alta.

◆Alopecia areata y sífilis se parecen al microscopio

Ambas tienen infiltrado peribulbar; ante una alopecia apolillada hay que pedir serología.

◆Biopsiar el pelo en el ángulo en que sale

El punch paralelo a los tallos evita seccionar los folículos y conserva los bulbos en la grasa.

◆Punch de matriz de 3 mm o menos: sin sutura

Defectos mayores en matriz requieren cierre para limitar la distrofia ungueal permanente.

◆Orientar la pieza cuando importan los márgenes

Un punto de sutura o una muesca a las 12 permite al patólogo decir qué margen está afecto.

◆Dermatitis herpetiforme: preguntar por la dieta

Meses de dieta sin gluten pueden negativizar la IgA granular y confundir el resultado.

Contraste con fuentes actuales

Actualización DermRX

Qué ha cambiado entre el número original (Dermatology World: Directions in Residency, invierno de 2018) y septiembre de 2026, con su fuente.

Actualización DermRXVasculitis: biopsiar la lesión más reciente, no una de más de 72 h

El original proponía H&E de lesiones de más de 72 h y reservaba las recientes para la IFD. La recomendación actual es tomar tanto la H&E como la IFD de las lesiones más recientes (idealmente menos de 48 h, y menos de 24 h para la IFD), con profundidad hasta hipodermis, porque el infiltrado neutrofílico y los depósitos de IgA se pierden pronto y en lesiones tardías solo queda un infiltrado linfocitario inespecífico.

Fuente: Carlson JA. Histopathology. 2010;56(1):3-23. PMID: 20055902. Frumholtz L, et al. Clin Rev Allergy Immunol. 2021;61(2):181-93. PMID: 32378145

Actualización DermRXSuero fisiológico para IFD: validado si llega en 24-48 h

El original ya lo prefería si la muestra llegaba en 48 h. El estudio comparativo de referencia obtuvo diagnóstico concluyente o probable en el 92 % de las biopsias en suero a las 24 h, 83 % a las 48 h, 68 % en nitrógeno líquido y 62 % en Michel a las 48 h, porque el lavado reduce la fluorescencia de fondo. Michel sigue siendo la opción si el transporte será más largo.

Fuente: Vodegel RM, et al. BMC Dermatol. 2004;4:10. PMID: 15333135

Actualización DermRXAlopecia cicatricial: biopsiar el borde activo, no evitarlo

El original recomendaba evitar el borde activo, lo que contradice la práctica actual: se biopsia el margen con signos de actividad (descamación o eritema perifolicular, penachos) y se evita el centro cicatricial. La biopsia guiada por tricoscopia dio diagnóstico en el 95 % de 80 alopecias cicatriciales, y una sola biopsia procesada con HoVert o HoVert modificado ofrece cortes verticales y horizontales sin necesidad de dos punch; la IFD rara vez cambia el diagnóstico.

Fuente: Miteva M, Tosti A. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2013;27(10):1299-303. PMID: 22449222. Nguyen JV, et al. J Cutan Pathol. 2011;38(5):401-6. PMID: 21251040. Adams L, et al. J Cutan Pathol. 2023;50(12):1099-103. PMID: 37203369

Actualización DermRXMelanoma: extirpación con 1-3 mm y confirmación histológica obligatoria

El original decía «exéresis completa» sin margen. La guía de la AAD precisa la biopsia excisional con 1-3 mm de margen como técnica preferida, y la guía europea EADO/EDF/EORTC 2024 exige confirmación histológica de toda sospecha y reserva la estadificación de imagen según el estadio AJCC 8.ª.

Fuente: Swetter SM, et al. J Am Acad Dermatol. 2019;80(1):208-50. PMID: 30392755. Garbe C, et al. Eur J Cancer. 2025;215:115152. PMID: 39700658

Actualización DermRXMelanoniquia: escisión tangencial de matriz como técnica de elección

El original solo mencionaba punch o escisión elíptica horizontal de matriz. El grupo de expertos en uña recomienda la escisión tangencial de matriz ante una melanoniquia sospechosa y la escisión longitudinal cuando la probabilidad de melanoma invasivo es alta; el estudio del recorte de lámina y la onicoscopia ayudan a decidir y planificar.

Fuente: Ricardo JW, et al. J Am Acad Dermatol. 2025;93(1):176-87. PMID: 40023404. Richert B, et al. J Am Acad Dermatol. 2013;69(1):96-104. PMID: 23453241

Actualización DermRXEpidermólisis ampollosa: el diagnóstico hoy es genético

El original indicaba microscopía electrónica en glutaraldehído. Las guías de laboratorio actuales sitúan el mapeo por inmunofluorescencia y la secuenciación genética como pruebas principales; la microscopía electrónica queda para centros con experiencia y casos seleccionados.

Fuente: Has C, et al. Br J Dermatol. 2020;182(3):574-92. PMID: 31090061

Actualización DermRXDermatofibrosarcoma: confirmar la fusión y tratar con cirugía micrográfica

El original se limitaba a la biopsia incisional profunda. La guía europea de 2024 recomienda demostrar la translocación o el tránscrito de fusión para confirmar el diagnóstico, informar la transformación fibrosarcomatosa y tratar con cirugía micrográfica o, si no está disponible, exéresis con 2-3 cm de margen lateral.

Fuente: Saiag P, et al. Eur J Cancer. 2025;218:115265. PMID: 39904126

Actualización DermRXMicosis fungoide precoz: algoritmo integrado y clonalidad

El original insistía en el afeitado amplio. El diagnóstico de la micosis fungoide inicial se basa en un algoritmo que suma criterios clínicos, histológicos, inmunohistoquímicos y de clonalidad T, y la clasificación WHO-EORTC vigente mantiene esa integración; por eso importan el número de biopsias y el estudio molecular más que la técnica concreta.

Fuente: Pimpinelli N, et al. J Am Acad Dermatol. 2005;53(6):1053-63. PMID: 16310068. Willemze R, et al. Blood. 2019;133(16):1703-14. PMID: 30635287

Recursos relacionados

Conectar con DermRX

Inmunodermatopatología: qué responde cada prueba (Henry Ford)→Micosis fungoide: repetir la muestra si la clínica convence (Henry Ford)→Patrones de inmunofluorescencia directa (Boards’ Fodder)→Alopecias (Boards’ Fodder)→Púrpura palpable y retiforme en 30 segundos→Exéresis: orientar la cicatriz y liberar tensión (Henry Ford)→Consentimientos informados DermRX→DermRX Pathology→

Fuentes

Referencias

Lectura de referencia

Jen Seyffert, DO, and Puja Kathrotiya, MD. Biopsy techniques. Boards’ Fodder. Dermatology World: Directions in Residency, invierno de 2018. American Academy of Dermatology.

Fuentes consultadas para contrastar y actualizar

Elston DM, Stratman EJ, Miller SJ. Skin biopsy: biopsy issues in specific diseases. J Am Acad Dermatol. 2016;74(1):1-16. PMID: 26702794
Vodegel RM, de Jong MC, Meijer HJ, Weytingh MB, Pas HH, Jonkman MF. Enhanced diagnostic immunofluorescence using biopsies transported in saline. BMC Dermatol. 2004;4:10. PMID: 15333135
Carlson JA. The histological assessment of cutaneous vasculitis. Histopathology. 2010;56(1):3-23. PMID: 20055902
Frumholtz L, Laurent-Roussel S, Lipsker D, Terrier B. Cutaneous vasculitis: review on diagnosis and clinicopathologic correlations. Clin Rev Allergy Immunol. 2021;61(2):181-93. PMID: 32378145
Miteva M, Tosti A. Dermoscopy guided scalp biopsy in cicatricial alopecia. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2013;27(10):1299-303. PMID: 22449222
Nguyen JV, Hudacek K, Whitten JA, Rubin AI, Seykora JT. The HoVert technique: a novel method for the sectioning of alopecia biopsies. J Cutan Pathol. 2011;38(5):401-6. PMID: 21251040
Swetter SM, Tsao H, Bichakjian CK, et al. Guidelines of care for the management of primary cutaneous melanoma. J Am Acad Dermatol. 2019;80(1):208-50. PMID: 30392755
Garbe C, Amaral T, Peris K, et al. European consensus-based interdisciplinary guideline for melanoma. Part 1: Diagnostics – Update 2024. Eur J Cancer. 2025;215:115152. PMID: 39700658
Ricardo JW, Bellet JS, Jellinek N, et al. Evaluation and diagnosis of longitudinal melanonychia: a clinical review by a nail expert group. J Am Acad Dermatol. 2025;93(1):176-87. PMID: 40023404
Has C, Liu L, Bolling MC, et al. Clinical practice guidelines for laboratory diagnosis of epidermolysis bullosa. Br J Dermatol. 2020;182(3):574-92. PMID: 31090061
Saiag P, Lebbe C, Brochez L, et al. Diagnosis and treatment of dermatofibrosarcoma protuberans. European interdisciplinary guideline – update 2024. Eur J Cancer. 2025;218:115265. PMID: 39904126
Pimpinelli N, Olsen EA, Santucci M, et al. Defining early mycosis fungoides. J Am Acad Dermatol. 2005;53(6):1053-63. PMID: 16310068