Inmunofluorescencia, serología, PCR, secuenciación y examen directo: qué prueba pedir, con qué muestra y cómo leer el resultado
Sobre la sección «Laboratory techniques» (capítulo 1, Basic Science) · Alikhan y Hocker, 2.ª ed., 2024
Buena parte de los errores de laboratorio en dermatología ocurre antes de que la muestra llegue al laboratorio: biopsia del sitio equivocado, medio inadecuado o una prueba que no responde a la pregunta clínica. Esta lectura ordena las técnicas por lo que detectan (anticuerpo, ácido nucleico, célula o microorganismo), por la muestra que exigen y por sus fallos, con el marco europeo vigente a octubre de 2026.
Obra de referencia: Ali Alikhan y Thomas L. H. Hocker (eds.), Review of Dermatology, 2.ª ed. (Elsevier, 2024). Síntesis editorial DermRX actualizada a octubre de 2026 · Revisión clínica individual pendiente · 18 min de lectura.
En 20 segundos
- La prueba se elige antes de coger el bisturí: formol para histología e inmunohistoquímica; tejido sin fijar, en suero fisiológico o medio de Michel, para inmunofluorescencia directa; fragmento estéril sin fijador para cultivo.
- La inmunofluorescencia directa de piel perilesional sigue siendo el patrón de referencia de las ampollosas autoinmunes, con una sensibilidad cercana al 91 % y una especificidad cercana al 98 %; la serología añade el antígeno y sirve para el seguimiento.
- La piel separada con cloruro sódico 1 M distingue los anticuerpos que se fijan al techo (BP180, BP230) de los que quedan en el suelo (laminina 332, p200, colágeno VII), algo que la inmunofluorescencia sobre piel intacta no resuelve.
- La reacción en cadena de la polimerasa (PCR) ha sustituido al frotis de Tzanck y al cultivo vírico en el herpes; en las micosis, el examen con hidróxido potásico sigue siendo la primera prueba, pero la especie y la resistencia exigen cultivo y métodos moleculares.
- Clonalidad T, hibridación in situ fluorescente (FISH), PRAME o secuenciación son pruebas complementarias: apoyan o debilitan un diagnóstico que sigue siendo clinicopatológico, y todas tienen falsos positivos y falsos negativos.
Claves de la lectura
El medio de transporte decide qué pruebas son posibles
El formol conserva la arquitectura y permite histología, inmunohistoquímica, FISH y la mayoría de los estudios de ADN, pero anula la inmunofluorescencia directa y mata cualquier microorganismo. La inmunofluorescencia pide tejido congelado o conservado en suero fisiológico o medio de Michel; el cultivo, un fragmento estéril sin fijador; el ARN, tejido fresco o conservado de forma específica. Cuando la sospecha lo justifica, se toman dos o tres fragmentos.
La directa mira la piel del paciente; la indirecta, su suero
En la inmunofluorescencia directa (IFD), anticuerpos marcados contra IgG, IgA, IgM y C3 humanos revelan lo que ya está depositado en la biopsia. En la indirecta (IFI), el suero se incuba sobre un sustrato ajeno y un segundo anticuerpo marcado delata los autoanticuerpos circulantes. El sustrato se elige según la sospecha: esófago de mono para pénfigo, vejiga de rata para pénfigo paraneoplásico y piel humana separada con sal para los penfigoides.
El sitio de la biopsia para IFD no es el de la histología
En las ampollosas autoinmunes y en la dermatitis herpetiforme la IFD se hace en piel perilesional, no en la ampolla, donde los depósitos se pierden. La histología, en cambio, quiere la lesión: son dos muestras distintas. En el penfigoide de mucosas, repetir la biopsia aumenta mucho el rendimiento, y en la mucosa oral una muestra de zona no lesional rinde igual que la perilesional.
ELISA da una cifra; el inmunoblot, un peso molecular
El enzimoinmunoanálisis (ELISA) fija un antígeno recombinante al pocillo y mide cuánto anticuerpo del suero se une: es rápido y cuantitativo. Los valores de anti-desmogleína 1 y 3, anti-BP180 NC16A y anti-colágeno VII siguen la actividad de la enfermedad, y las guías recomiendan repetirlos en el seguimiento. El inmunoblot separa antes las proteínas por tamaño y sirve cuando el antígeno es raro o no existe prueba comercial, como en el penfigoide anti-p200.
PCR: tan sensible que hay que saber qué se pregunta
La PCR amplifica el fragmento de ADN comprendido entre dos cebadores, de modo que solo encuentra lo que se ha ido a buscar. Su sensibilidad es también su riesgo: una mínima contaminación con ADN ajeno da un falso positivo, y detectar ADN no equivale a demostrar un microorganismo viable. La variante cuantitativa mide en qué ciclo aparece el producto; la que parte de ARN, con retrotranscripción previa, mide expresión génica y exige tejido fresco o bien conservado.
Un clon T no es un linfoma, y su ausencia no lo descarta
El estudio del reordenamiento del receptor de células T busca una población con el mismo reordenamiento entre linfocitos policlonales. Hay clones en dermatosis inflamatorias y linfomas iniciales sin clon detectable, de modo que el resultado solo pesa junto a la clínica y la histología. Encontrar el mismo clon en dos biopsias, o en piel y sangre, informa mucho más que un clon aislado. La secuenciación masiva del receptor supera en sensibilidad y especificidad a la PCR con electroforesis capilar.
El examen directo responde en minutos, con límites conocidos
Hidróxido potásico para hifas y levaduras, raspado con aceite para el ácaro de la sarna, frotis de Tzanck para células multinucleadas o acantolíticas y luz de Wood siguen resolviendo dudas en la misma consulta. Ninguno identifica la especie ni el virus, todos dependen de quien toma la muestra y de quien la mira, y un resultado negativo no descarta el diagnóstico. Su papel hoy es orientar la decisión inmediata mientras llega la confirmación.
Técnica por técnica: qué detecta, qué muestra pide y dónde falla
Cuatro bloques según lo que se busca: anticuerpos, ácidos nucleicos, células tumorales o microorganismos. En cada técnica, el fundamento mínimo para pedirla bien y sus límites.
Anticuerpos en la piel y en el suero
Inmunofluorescencia directa (IFD)
Tejido sin fijar · piel perilesional- Qué detecta
- Inmunoglobulinas y complemento ya depositados en la piel o la mucosa, y su patrón: intercelular en red (pénfigos), lineal en la membrana basal (penfigoides, epidermólisis ampollosa adquirida) o granular en las papilas (dermatitis herpetiforme).
- Muestra
- Biopsia perilesional, congelada o en suero fisiológico o medio de Michel hasta su procesamiento. Nunca en formol.
- Límite
- Informa poco del antígeno. El patrón de serración (en u, colágeno VII; en n, los demás penfigoides) solo se distingue en unas tres cuartas partes de las muestras, y nunca en mucosa.
- Otras indicaciones
- En el lupus se biopsia una lesión establecida y en las vasculitis la más reciente posible, porque los depósitos se degradan pronto.
Inmunofluorescencia indirecta (IFI)
Suero · sustrato según la sospecha- Sustratos
- Esófago de mono: patrón intercelular en pénfigo vulgar y foliáceo, y antiendomisio IgA en la dermatitis herpetiforme. Vejiga de mono o de rata: anticuerpos antiplaquinas del pénfigo paraneoplásico. Piel humana separada con sal: penfigoides.
- Rendimiento
- En los penfigoides, el esófago de mono detecta el 60–70 % y la piel humana normal el 80 %; la piel separada con sal aumenta aún más la sensibilidad.
- Límite
- Lectura dependiente del observador y resultado semicuantitativo, por diluciones.
Piel separada con cloruro sódico (salt-split)
NaCl 1 M · techo o suelo- Fundamento
- La piel humana normal incubada en cloruro sódico 1 M se despega por la lámina lúcida; sobre ese sustrato se hace la IFI con el suero del paciente.
- Techo
- Anticuerpos contra BP180 y BP230: penfigoide ampolloso, penfigoide gestacional y la mayoría de los penfigoides de mucosas.
- Suelo
- Anticuerpos contra laminina 332, proteína p200 o colágeno VII: penfigoide de mucosas anti-laminina 332, penfigoide anti-p200 y epidermólisis ampollosa adquirida.
- Para qué sirve
- Un suelo teñido en un supuesto penfigoide ampolloso obliga a identificar el antígeno; con la laminina 332, además, a buscar una neoplasia.
ELISA
Suero · antígeno recombinante · cuantitativo- Antígenos
- Desmogleína 1 y 3, envoplaquina, BP180 NC16A, BP230 y colágeno VII; transglutaminasas 2 y 3 (IgA) en la dermatitis herpetiforme.
- Límite
- Solo reconoce los epítopos incluidos en el antígeno recombinante: un ELISA negativo no excluye la enfermedad si la IFD es positiva.
Inmunoblot (Western blot) e inmunoprecipitación
Laboratorios de referencia- Fundamento
- Las proteínas de un extracto cutáneo o un antígeno recombinante se separan por tamaño en un gel, se transfieren a una membrana y se enfrentan al suero.
- Qué aporta
- El peso molecular de la proteína reconocida: 200 kDa en el penfigoide anti-p200, 290 kDa para el colágeno VII. Es menos cuantitativo que el ELISA.
- Cuándo pedirlo
- IFD positiva con serología comercial negativa, y sospecha de dermatosis IgA lineal, pénfigo paraneoplásico o penfigoide anti-p200.
Inmunohistoquímica
Tejido en formol y parafina- Fundamento
- Un anticuerpo contra el antígeno de interés se revela con una reacción enzimática coloreada sobre el corte. La fijación enmascara epítopos, que se recuperan calentando el corte en un tampón.
- Uso
- Identificar estirpes celulares y marcadores en el mismo bloque de la histología; también sobre cortes en congelación durante la cirugía de Mohs.
- Límite
- Protocolos y anticuerpos varían entre laboratorios, y no todos los antígenos resisten igual la fijación.
ADN y ARN
PCR, PCR cuantitativa y RT-PCR
Rápida y sensible · exige diana conocida- Variantes
- La PCR cuantitativa (en tiempo real) mide el producto ciclo a ciclo: cuanto más ADN de partida, antes aparece. La RT-PCR convierte primero el ARN en ADN complementario para medir expresión.
- Uso clínico
- Detección y tipado de virus (herpes simple, varicela-zóster), identificación de dermatofitos y otros microorganismos, y base de los estudios de clonalidad y de mutaciones.
- Fallos
- Contaminación (falso positivo), ADN degradado o inhibidores (falso negativo) y cebadores que no cubren la variante o la especie buscada.
Secuenciación de Sanger y secuenciación masiva
De una variante al exoma- Sanger
- Lee unos cientos de bases contiguas a partir de un cebador. Adecuada para un gen pequeño, una variante familiar conocida o la confirmación de un hallazgo.
- Masiva (NGS)
- Fragmenta el ADN, añade adaptadores y secuencia en paralelo millones de fragmentos. Permite paneles, exoma o genoma; tiene dificultades con las regiones muy repetitivas.
- Uso clínico
- Genodermatosis con muchos genes candidatos, mutaciones tumorales con implicación terapéutica (BRAF en el melanoma) y clonalidad T.
- ARN
- La secuenciación de ARN y los microarrays perfilan la expresión de miles de genes; son, sobre todo, herramientas de investigación.
Tumores: clonalidad, citogenética y citometría
Reordenamiento del receptor de células T
Complemento, nunca diagnóstico aislado- Fundamento
- PCR de los genes del receptor T y análisis del tamaño de los productos: un pico dominante indica una población clonal.
- Secuenciación masiva
- En piel, sensibilidad del 69–100 % y especificidad del 86–100 %, frente al 44–72 % y el 77–88 % de la PCR con electroforesis capilar; además permite seguir el clon en el tiempo.
FISH e hibridación genómica comparada
Ganancias, pérdidas y translocaciones- FISH
- Sondas fluorescentes se unen a una secuencia concreta sobre el corte: cada señal es una copia. Se hace en tejido fijado, permite elegir la zona y basta con unas decenas de células.
- Hibridación comparada
- Explora ganancias y pérdidas en todo el genoma, pero analiza un conjunto de células: una alteración presente en menos del 30–50 % puede pasar inadvertida. Es más cara y más lenta.
- Uso
- Lesiones melanocíticas ambiguas, como apoyo de la histología. Para un panel comercial de cuatro sondas se ha comunicado una sensibilidad superior al 85 % y una especificidad superior al 95 %.
Citometría de flujo
Sangre · síndrome de Sézary- Fundamento
- Células en suspensión marcadas con anticuerpos fluorescentes pasan una a una ante un láser, que las cuenta y las clasifica por los marcadores que expresan.
- Uso
- Cuantificar la afectación sanguínea en la micosis fungoide y el síndrome de Sézary mediante el recuento absoluto de linfocitos CD4+CD7− o CD4+CD26−.
- Clasificación
- Propuesta de la Organización Europea para la Investigación y el Tratamiento del Cáncer (EORTC): B0, menos de 250/µL; B1, de 250 a menos de 1.000/µL; B2, 1.000/µL o más junto con un clon T en sangre, porque hay poblaciones reactivas con el mismo fenotipo.
Examen directo y cultivos
Examen directo con hidróxido potásico (KOH)
Micosis superficiales · resultado inmediato- Técnica
- Escamas del borde activo, pelos arrancados o detritus subungueal se aclaran con KOH, que disuelve la queratina y deja ver hifas, esporas o levaduras.
- Valor
- Confirma que hay hongo y permite decidir el mismo día. No identifica la especie ni informa de la sensibilidad.
- Falsos negativos
- Muestra escasa, toma del centro de la lesión o antifúngico reciente. Una clínica sugestiva con KOH negativo merece cultivo o PCR.
Cultivo e identificación de hongos
Especie y sensibilidad- Qué aporta
- Identifica la especie por morfología, espectrometría de masas (MALDI-TOF) o secuenciación, y permite el estudio de sensibilidad.
- Límite
- Tarda semanas y puede ser negativo con examen directo positivo. La mayoría de las pruebas disponibles no detecta de forma específica Trichophyton indotineae.
- Cuándo ir más allá
- Tiña extensa o que no responde a terbinafina: PCR con discriminación de especie o secuenciación de la región espaciadora interna transcrita (ITS) y, si es posible, del gen de la escualeno epoxidasa (SQLE).
Frotis de Tzanck
Citología · desplazado por la PCR- Técnica
- Raspado del suelo de una vesícula reciente destechada, extendido y teñido.
- Qué muestra
- Queratinocitos gigantes multinucleados en herpes simple y varicela-zóster, sin distinguirlos entre sí; células acantolíticas en los pénfigos.
- Lugar actual
- La guía europea de herpes genital ya no lo recomienda salvo con recursos muy limitados; el método de elección es la PCR, que además tipa el virus.
Raspado y dermatoscopia en la sarna
Ácaro, huevos o heces- Técnica
- Raspado de un surco con una gota de aceite y observación al microscopio; la dermatoscopia localiza el ácaro en el extremo del surco sin raspar.
- Criterios
- La Alianza Internacional para el Control de la Sarna (IACS) define tres niveles de certeza: sarna confirmada, sarna clínica y sarna sospechada. Un raspado negativo no excluye el diagnóstico.
Luz de Wood
Fluorescencia a la cabecera- Uso
- Fluorescencia rojo coral en el eritrasma, verde amarillenta en las tiñas del cuero cabelludo por Microsporum y realce de las máculas acrómicas del vitíligo.
- Límite
- Las tiñas por Trichophyton tonsurans no fluorescen, y el lavado reciente o los productos tópicos alteran el resultado.
Cultivo de tejido: bacterias, micobacterias y hongos profundos
Biopsia estéril, sin formol- Muestra
- Fragmento de biopsia en recipiente estéril con unas gotas de suero fisiológico, enviado sin demora y con la sospecha escrita, porque micobacterias y hongos exigen medios y temperaturas propios.
- Complemento
- La PCR sobre el mismo tejido acelera el diagnóstico de micobacterias y leishmaniasis, pero no sustituye al cultivo cuando se necesita el estudio de sensibilidad.
Contrastes que evitan pedir la prueba equivocada
Parejas de técnicas que se confunden en la petición o en la interpretación del resultado.
Inmunofluorescencia directa frente a indirecta
- Muestra
- Directa: biopsia perilesional sin fijar. Indirecta: suero.
- Pregunta
- Directa: si hay depósito y con qué patrón. Indirecta: si hay anticuerpo circulante y contra qué estructura.
- Resultado negativo
- Directa negativa con sospecha alta: repetir la biopsia. Indirecta negativa: frecuente en el penfigoide de mucosas, donde los anticuerpos circulan a títulos bajos.
- Seguimiento
- Se hace con la serología cuantitativa, no repitiendo biopsias de rutina.
FISH frente a PRAME en lesiones melanocíticas
- Qué mide
- FISH: número de copias de regiones cromosómicas concretas. PRAME: expresión de una proteína por inmunohistoquímica, valorada por el porcentaje de núcleos teñidos.
- Rendimiento
- PRAME con umbral de positividad en el 50 % de las células: sensibilidad del 73,5 % y especificidad del 91,5 % en metaanálisis, con peor rendimiento en las lesiones spitzoides.
- Lectura
- Ninguna decide sola: ambas se integran con la histología.
KOH, cultivo y PCR ante una tiña
- KOH
- Resultado en minutos; dice si hay hongo, no cuál.
- Cultivo
- Resultado en semanas; da la especie y permite el estudio de sensibilidad.
- PCR
- Más rápida que el cultivo y, si discrimina especie, la vía para reconocer T. indotineae.
Qué haría en consulta
Elaboración editorial propia de DermRX: escenarios construidos al integrar la lectura con guías, consensos y fichas técnicas vigentes. No sustituyen al juicio clínico.
Si un paciente de 80 años consulta por ampollas tensas y prurito, y quiero salir de esa visita con todas las muestras tomadas
Tomaría dos biopsias: una de una ampolla reciente en formol y otra de piel perilesional en suero fisiológico o medio de Michel para IFD. En la misma extracción pediría anti-BP180 NC16A y anti-BP230 por ELISA e IFI sobre piel separada con sal, y guardaría el valor basal para el seguimiento.
Si una paciente tiene gingivitis descamativa y erosiones conjuntivales, con una primera IFD negativa
No descartaría un penfigoide de mucosas: repetiría la IFD con una nueva biopsia, que puede ser de mucosa oral no lesional, y pediría IFI sobre piel separada con sal y anticuerpos anti-laminina 332. Si el suero tiñera el suelo por laminina 332, buscaría una neoplasia.
Si un adulto presenta placas anulares extensas y muy pruriginosas en tronco e ingles, tratadas sin éxito con terbinafina oral, tras residir en el subcontinente indio
Haría examen con KOH y cultivo, y pediría al laboratorio identificación molecular (PCR con discriminación de especie o secuenciación ITS) por sospecha de Trichophyton indotineae. Solicitaría estudio de sensibilidad o secuenciación de SQLE si estuvieran disponibles, y no repetiría terbinafina a ciegas.
Si una mujer joven consulta por erosiones genitales dolorosas de aspecto atípico, sin vesículas claras
No me bastaría el diagnóstico clínico ni un frotis de Tzanck: tomaría un hisopo de la base de la lesión para PCR de virus herpes simple con tipado y, si la distribución fuera unilateral, añadiría PCR de varicela-zóster. Pediría además el estudio de otras infecciones de transmisión sexual, sífilis incluida.
Si un paciente con eritrodermia de meses de evolución tiene una biopsia inespecífica y linfocitosis
Pediría citometría de flujo en sangre con recuento absoluto de linfocitos CD4+CD7− y CD4+CD26−, y estudio de clonalidad T en piel y en sangre para comparar los clones. No diagnosticaría un síndrome de Sézary por un clon aislado ni lo descartaría por una sola biopsia no concluyente.
Si varios residentes de un centro sociosanitario tienen prurito nocturno y el raspado del único surco visible resulta negativo
No lo atribuiría a otra causa por ese resultado: buscaría el ácaro con el dermatoscopio y aplicaría los criterios IACS, que admiten el diagnóstico de sarna clínica sin confirmación parasitológica. Trataría el brote de forma simultánea.
Perlas de examen y de consulta
◆El formol apaga la inmunofluorescencia
Una biopsia para IFD enviada en formol no se puede rescatar. Si la duda es una ampollosa autoinmune, vale más repetir la toma en el medio correcto que renunciar a la prueba de referencia.
◆Vejiga de rata, pista de neoplasia
La IgG que tiñe el urotelio de vejiga de rata y los anticuerpos anti-envoplaquina son los hallazgos serológicos más específicos del pénfigo paraneoplásico.
◆La serración no se lee en mucosa
El patrón en u o en n de la IFD exige cortes finos y gran aumento, solo se distingue en unas tres cuartas partes de las muestras y no sirve en las biopsias de mucosa.
◆El exoma es una parte pequeña
Las regiones codificantes suponen el 1–2 % del genoma. Un exoma normal no excluye variantes en promotores, potenciadores o ARN no codificantes.
◆Tzanck no pone apellido al herpes
Las células gigantes multinucleadas aparecen igual en el herpes simple y en la varicela-zóster. Para distinguirlos y tipar el virus hace falta la PCR.
◆Destechar y no esperar
Para la PCR de herpes la muestra se toma de la base de la lesión, tras abrir la vesícula, y cuanto antes: la producción de virus alcanza pronto su máximo y luego cae.
Actualización DermRX
Qué ha cambiado entre la obra (2024) y octubre de 2026, y qué conviene leer en clave europea.
Actualización DermRXAmpollosas: la serología con antígenos recombinantes ya es rutina
La obra presenta la IFI como poco disponible y poco estandarizada, e ilustra el ELISA solo con la desmogleína 3. Las guías europeas piden IFD y serología, y los ELISA y los mosaicos de IFI con antígenos recombinantes permiten hoy el diagnóstico serológico de alrededor del 90 % de las ampollosas autoinmunes cuando la clínica es conocida. La laminina β4 se ha sumado a la laminina γ1 como antígeno del penfigoide anti-p200.
Fuente: Borradori L, et al. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2022;36(10):1689-1704. PMID: 35766904. Schmidt E, et al. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2021;35(10):1926-1948. PMID: 34309078. van Beek N, et al. Front Immunol. 2024;15:1363032. PMID: 38903493.Actualización DermRXHerpes: la PCR sustituye al Tzanck y al cultivo
Esta sección de la obra no trata el examen directo, y los textos de repaso suelen conservar el frotis de Tzanck como prueba diagnóstica. La guía europea de herpes genital de 2024 considera la detección de ADN vírico el patrón de referencia, recomienda tipar el virus en todo primer episodio y ya no recomienda el Tzanck ni la detección de antígeno salvo en entornos con recursos muy limitados.
Fuente: Patel R, et al. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2024;39(4):742-758. PMID: 39620271.Actualización DermRXTrichophyton indotineae obliga a pedir identificación molecular
La obra no recoge este dermatofito emergente, a menudo resistente a terbinafina. Un consenso Delphi internacional de 2026 recomienda sospecharlo ante tiñas extensas o refractarias, mantener KOH y cultivo como primer paso y confirmarlo con PCR que discrimine la especie o con secuenciación ITS; para la resistencia, secuenciación de SQLE y estudio de sensibilidad. La mayoría de los ensayos actuales no lo detecta de forma específica.
Fuente: Gupta AK, et al. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2026 (en línea). doi:10.1111/jdv.70731. PMID: 42786909. Summerbell RC, et al. Clin Microbiol Rev. 2026:e0014224. PMID: 42725743.Actualización DermRXLesiones melanocíticas: de la FISH a PRAME y la secuenciación
La obra da a la FISH el papel central y cita un panel comercial de cuatro sondas. Se han sumado la inmunohistoquímica con PRAME (sensibilidad del 73,5 % y especificidad del 91,5 % en un metaanálisis de 26 estudios), los arrays de polimorfismos de un solo nucleótido y la secuenciación masiva, siempre leídos con la histología. La guía europea de melanoma de 2024 recomienda el estudio mutacional, sobre todo de BRAF V600, desde el estadio IIB/C.
Fuente: Garbe C, et al. Eur J Cancer. 2024;215:115152. PMID: 39700658. Kunc M, et al. Histopathology. 2023;83(1):3-14. PMID: 36942814. Busam KJ. Dermatol Clin. 2026;44(2):173-182. PMID: 41951320.Actualización DermRXLinfomas T: citometría en sangre y clonalidad por secuenciación
La obra menciona un panel de FISH de once sondas en sangre para el linfoma cutáneo T leucémico. La referencia europea para clasificar la sangre es la citometría de flujo según la propuesta de la EORTC, que sustituye al recuento manual de células de Sézary. Para la clonalidad, una revisión de 2024 atribuye a la secuenciación masiva del receptor T mayor sensibilidad y especificidad que a la PCR con electroforesis capilar.
Fuente: Scarisbrick JJ, et al. Eur J Cancer. 2018;93:47-56. PMID: 29477101. Shinohara MM, et al. J Cutan Pathol. 2024;51(10):813-819. PMID: 39021266.Actualización DermRXPruebas de elaboración propia y Reglamento europeo de diagnóstico in vitro
La obra aborda la disponibilidad y la estandarización de las pruebas desde la perspectiva estadounidense. En la Unión Europea, el artículo 5.5 del Reglamento (UE) 2017/746 condiciona las pruebas desarrolladas por los propios centros, como muchas IFI, inmunoblots y PCR de laboratorios de referencia. La Comisión Europea propuso modificarlo en diciembre de 2025, con el apoyo de la federación europea de medicina de laboratorio; el estado de la reforma debe comprobarse.
Fuente: Cobbaert C, et al. Clin Chem Lab Med. 2026;64(7):1455-1466. PMID: 42089505.Conectar con DermRX
Referencias
Lectura de referencia
Sección «Laboratory techniques» (capítulo 1, Basic Science). En: Alikhan A, Hocker TLH, editores. Review of Dermatology. 2.ª ed. Filadelfia: Elsevier; 2024.
Fuentes consultadas para contrastar y actualizar
- Borradori L, Van Beek N, Feliciani C, et al. Updated S2 K guidelines for the management of bullous pemphigoid initiated by the European Academy of Dermatology and Venereology (EADV). J Eur Acad Dermatol Venereol. 2022;36(10):1689-1704. PMID: 35766904.
- Schmidt E, Rashid H, Marzano AV, et al. European Guidelines (S3) on diagnosis and management of mucous membrane pemphigoid, initiated by the European Academy of Dermatology and Venereology – Part II. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2021;35(10):1926-1948. PMID: 34309078.
- Antiga E, Bech R, Maglie R, et al. S2k guidelines on the management of paraneoplastic pemphigus/paraneoplastic autoimmune multiorgan syndrome initiated by the European Academy of Dermatology and Venereology (EADV). J Eur Acad Dermatol Venereol. 2023;37(6):1118-1134. PMID: 36965110.
- Patel R, Moran B, Clarke E, et al. 2024 European guidelines for the management of genital herpes. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2024;39(4):742-758. PMID: 39620271.
- Garbe C, Amaral T, Peris K, et al. European consensus-based interdisciplinary guideline for melanoma. Part 1: Diagnostics – Update 2024. Eur J Cancer. 2024;215:115152. PMID: 39700658.
- Scarisbrick JJ, Hodak E, Bagot M, et al. Blood classification and blood response criteria in mycosis fungoides and Sézary syndrome using flow cytometry: recommendations from the EORTC cutaneous lymphoma task force. Eur J Cancer. 2018;93:47-56. PMID: 29477101.
- Gupta AK, Talukder M, Saunte DML, et al. Consensus recommendations for Trichophyton indotineae: A modified Delphi study. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2026 (publicación electrónica previa a la impresión). doi:10.1111/jdv.70731. PMID: 42786909.
- Engelman D, Fuller LC, Steer AC, et al. Consensus criteria for the diagnosis of scabies: A Delphi study of international experts. PLoS Negl Trop Dis. 2018;12(5):e0006549. PMID: 29795566.
- van Beek N, Holtsche MM, Atefi I, et al. State-of-the-art diagnosis of autoimmune blistering diseases. Front Immunol. 2024;15:1363032. PMID: 38903493.
- Summerbell RC, Caplan AS, Cox VRV, et al. A new era of dermatophytes: emerging species, new risk factors, and taxonomic change. Clin Microbiol Rev. 2026:e0014224. PMID: 42725743.
- Kunc M, Żemierowska N, Skowronek F, Biernat W. Diagnostic test accuracy meta-analysis of PRAME in distinguishing primary cutaneous melanomas from benign melanocytic lesions. Histopathology. 2023;83(1):3-14. PMID: 36942814.
- Busam KJ. Ancillary Molecular Tests for the Diagnosis of Melanocytic Tumors. Dermatol Clin. 2026;44(2):173-182. PMID: 41951320.
- Shinohara MM, Rieger KE, Sundram U, et al. Assessing T-cell receptor clonality by next-generation sequencing in atypical cutaneous lymphoid infiltrates and cutaneous T-cell lymphoma: A scoping review. J Cutan Pathol. 2024;51(10):813-819. PMID: 39021266.
- Cobbaert C, Neumaier M, Capoluongo E, et al. EFLM position statement on the proposed 2025/0404(COD) IVDR Amendment of Article 5.5. Clin Chem Lab Med. 2026;64(7):1455-1466. PMID: 42089505.